Nouvelle découverte sur les récepteurs d’entrée des coronavirus dans les cellules humaines
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25 OCTOBRE 2023
Communiqué de presse
Tissu respiratoire humain, avec les cellules ciliées marquées en vert (anticorps anti-TMPRSS2), noyaux en bleu foncé, membranes cellulaires en bleu clair. © Vincent Michel, Institut Pasteur
Le virus SARS-CoV-2, responsable de la Covid-19, peut provoquer un syndrome respiratoire aigu sévère, mais avant son apparition en 2019, d’autres coronavirus étaient déjà connus pour être responsables de rhumes saisonniers bénins. Pour quelles raisons un coronavirus va-t-il affecter plus sévèrement l’humain qu’un autre coronavirus ? Les chercheuses et chercheurs de l’Institut Pasteur, d’Université Paris Cité et du VRI apportent aujourd’hui un élément de réponse en identifiant la porte d’entrée d’un coronavirus saisonnier, le virus HKU1, dans les cellules humaines. Le récepteur sur lequel se fixe le HKU1 est différent de celui utilisé par le SARS-CoV-2, ce qui pourrait expliquer en partie la différence de sévérité de ces deux coronavirus. Dans le cadre de la surveillance de l’évolution virale, les récepteurs sont des cibles d’intérêt pour comprendre la transmissibilité et la pathologie des coronavirus. Ces résultats seront publiés dans la revue Nature, le 25 octobre 2023.
Sept coronavirus sont connus pour avoir la capacité d’infecter les humains. Quatre sont généralement bénins : HKU1, 229E, NL63 et OC43, et trois sont plus pathogènes : SARS-CoV-1, Mers-CoV et SARS-CoV-2.
Le virus HKU1 a été identifié pour la première fois chez un patient âgé atteint d’une pneumonie grave à Hong Kong en 2005. Le HKU1 infecte essentiellement les cellules de l’arbre respiratoire supérieur, comme le SARS-CoV-2, mais il atteint rarement les bronches et alvéoles pulmonaires. Le virus HKU1 provoque des rhumes et autres symptômes respiratoires bénins. Des complications incluant de graves infections des voies respiratoires, en particulier chez les jeunes enfants, les personnes âgées et les personnes immunodéprimées peuvent survenir. On estime que 70 % des enfants sont infectés avant l’âge de 6 ans. Au total, entre 75 et 95 % de la population mondiale a été exposée au HKU1, de manière comparable aux autres coronavirus humains saisonniers.
Au niveau cellulaire, après s’être liées à leurs récepteurs, les protéines de spike des coronavirus sont clivées, c’est-à-dire scindées en deux parties. Ce phénomène de clivage est indispensable pour la fusion du virus, l’entrée et la multiplication virale. Certains coronavirus (SARS-CoV-2 et NL63) utilisent le récepteur ACE2 comme porte d’entrée dans les cellules. Les seuls coronavirus dont les récepteurs n’étaient pas connus jusqu’à présent sont HKU1 et OC43.
Les scientifiques de huit unités de l’Institut Pasteur ont collaboré et identifié l’enzyme TMPRSS2 comme étant le récepteur sur lequel HKU1 se fixe pour entrer dans les cellules. Après cette liaison, TMPRSS2 déclenche la fusion de HKU1 avec la cellule et entraîne ainsi l’infection virale. Les chercheuses et chercheurs montrent, par une combinaison de techniques in vitro et en culture cellulaire, que TMPRSS2 est un récepteur de haute affinité pour la spike de HKU1, ce qui n’est pas le cas pour SARS-CoV-2.
« Identifier le récepteur d’un virus permet de mieux caractériser les cellules ciblées, de comprendre les mécanismes d’entrée et de multiplication virale ainsi que la physiopathologie de l’infection, » commente Olivier Schwartz, co-principal auteur de l’étude et directeur de l’unité Virus et immunité à l’Institut Pasteur.
« Nos résultats illustrent aussi les diverses stratégies d’évolution des coronavirus, qui utilisent TMPRSS2 soit pour se lier aux cellules cibles, soit pour amorcer la fusion et l’entrée virale, » complète Julian Buchrieser, co-principal auteur de l’étude et chercheur au sein de l’unité Virus et immunité à l’Institut Pasteur.
L’utilisation de différents récepteurs impacte probablement le degré de sévérité de ces virus pathogènes pour l’homme. En effet, la présence des récepteurs varie entre les cellules de l’arbre respiratoire et va donc influencer la sensibilité des cellules à l’infection, et la propagation virale. Connaître la voie d’entrée cellulaire devrait permettre aussi de mieux lutter contre l’infection à travers le développement de thérapies ciblées, et d’évaluer le risque de virulence des prochains coronavirus qui pourraient émerger.
En parallèle, les équipes de l’Institut Pasteur menées par Pierre Lafaye et Felix Rey ont développé et caractérisé des nano-anticorps (tout petits anticorps) qui bloquent l’infection par le HKU1 en se fixant sur le récepteur TMPRSS2. Ces réactifs ont été brevetés pour de potentielles activités thérapeutiques.
Ces travaux ont été financés par les organismes de recherche cités plus haut, ainsi que par La Fondation pour la Recherche Médicale (FRM), l’ANRS-MIE, le Vaccine Research Institute, le projet européen HERA DURABLE, le Labex IBEID, et le projet ANR/FRM Flash Covid.
Différentes voies d’entrée du SARS-CoV-2 et de HKU1 dans les cellules humaines. SARS-CoV-2 se fixe sur la protéine ACE2. La protéase TMPRSS2 coupe ensuite la spike pour permettre la fusion du virus et l’entrée dans la cellule cible. HKU1 se fixe directement sur TMPRSS2 pour entrer dans la cellule sans utiliser ACE2. © Institut Pasteur
Sources
TMPRSS2 is a functional receptor for human coronavirus HKU1, Nature, 25 octobre 2023
Nell Saunders1, Ignacio Fernandez2, Cyril Planchais3, Vincent Michel4, Maaran Michael Rajah1, Eduard Baquero Salazar5, Jeanne Postal1, Francoise Porrot1, Florence Guivel-Benhassine1, Catherine Blanc6, Gaëlle Chauveau-Le Friec7, Augustin Martin1, Ludivine Grzelak1, Rischa Maya Oktavia2, Annalisa Meola2, Olivia Ahouzi2, Hunter Hoover-Watson1, Matthieu Prot8, Deborah Delaune8,13, Marion Cornelissen9,10, Martin Deijs10,11, Veronique Meriaux7, Hugo Mouquet3, Etienne Simon-Lorière8,14, Lia van der Hoek10,11, Pierre Lafaye7, Felix Rey2, Julian Buchrieser1,#,* and Olivier Schwartz1,12,#,*
1Virus & Immunity Unit, Institut Pasteur, Université de Paris Cité, CNRS UMR 3569, Paris, France
2Structural Virology Unit, Institut Pasteur, Université de Paris Cité, CNRS UMR 3569, Paris, France
3Humoral Immunology Unit, Institut Pasteur, Université de Paris Cité, INSERM U1222, Paris, France
4Pathogenesis of Vascular Infections Unit, Institut Pasteur, INSERM, Paris, France.
5Nanoimaging core, Institut Pasteur, Université de Paris Cité, INSERM U1222, Paris, France
6Pasteur-TheraVectys Joint Lab, Institut Pasteur, Université de Paris Cité, Paris, France
7Antibody Engineering Platform, C2RT, Institut Pasteur, Université de Paris Cité, CNRS UMR 3528, Paris, France.
8G5 Evolutionary Genomics of RNA Viruses, Institut Pasteur, Paris, France.
9Department of Medical Microbiology and Infection Prevention, Amsterdam UMC, Molecular Diagnostic Unit, University of Amsterdam, 1105 AZ Amsterdam, Netherlands.
10Amsterdam Institute for Infection and Immunity, Amsterdam, The Netherlands
11Department of Medical Microbiology and Infection Prevention, Amsterdam UMC, Laboratory of Experimental Virology, University of Amsterdam, 1105 AZ Amsterdam, Netherlands.
12Vaccine Research Institute, Creteil, France
13Institut de Recherche Biomédicale des Armées, Brétigny-sur-Orge, France
14National Reference Center for viruses of respiratory infections, Institut Pasteur, Paris, France.
#Co-last authors
*Corresponding authors
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